Утверждены Минздравом СССР лабораторная диагностика сальмонеллезов человека и животных, обнаружение сальмонелл в кормах, продуктах питания и объектах внешней среды (методические указания)




НазваниеУтверждены Минздравом СССР лабораторная диагностика сальмонеллезов человека и животных, обнаружение сальмонелл в кормах, продуктах питания и объектах внешней среды (методические указания)
страница8/12
Дата конвертации19.11.2013
Размер2.58 Mb.
ТипМетодические указания
1   ...   4   5   6   7   8   9   10   11   12
РЕЦЕПТЫ КОНСЕРВАНТОВ, СТАБИЛИЗАТОРОВ И ПИТАТЕЛЬНЫХ СРЕД


1. Консерванты и стабилизаторы


1.1. Глицериновый


Не является официальной версией, бесплатно предоставляется членам Ассоциации лесопользователей Приладожья, Поморья и Прионежья – www.alppp.ru. Постоянно действующий третейский суд.


    Состав:


    Натрия хлорид (NaCl), 0,85-процентный раствор                  

1000 мл


    Глицерин нейтральный                                           

500 мл


    Натрия гидрофосфат безводный (Na HPO ), 20-процентный раствор  

150 мл


                                    2   4


Приготовление. Смешивают первые два ингредиента и добавляют раствор натрия гидрофосфата

в таком количестве, чтобы довести pH до 7,8 - 8,0, затем разливают в пробирки или флаконы,

стерилизуют в автоклаве 15 мин. при температуре 112 °С или текучим паром три дня подряд. После

стерилизации pH 7,6 - 7,8.


1.2. Фосфатно-буферный


    Состав:


    Калия дигидрофосфат (KH PO )                                   

0,45 г


                           2  4


    Натрия гидрофосфат безводный                                   

5,34 г


    Вода дистиллированная                                          

1000 мл


Приготовление. Ингредиенты смешивают, разливают в пробирки или флаконы, стерилизуют в

автоклаве 30 мин. при температуре 121 °С.


1.3. Буферный глицерино-солевой


    Состав:


    Натрия хлорид                                                  

4,2 г


    Калия гидрофосфат (K HPO )                                     

3,1 г


                        2   4


    Калия дигидрофосфат                                            

1,0 г


    Глицерин нейтральный                                           


Не является официальной версией, бесплатно предоставляется членам Ассоциации лесопользователей Приладожья, Поморья и Прионежья – www.alppp.ru. Постоянно действующий третейский суд.


300 мл


    Вода дистиллированная                                          

700 мл


Приготовление. Ингредиенты растворяют, перемешивают, смесь разливают в стерильные

пробирки по 5 мл и автоклавируют 30 мин. при температуре 112 °С. Рекомендуется с целью контроля

в процессе хранения раствор слабо подкрашивать феноловым красным.


2. Среды обогащения <*>


--------------------------------


<*> Для получения сред обогащения двойной концентрации (при исследовании жидких

материалов) соответственно уменьшают вдвое объем дистиллированной воды.


Предварительную среду обогащения готовят, как указано в п. 1.2, но вместо дистиллированной

воды используют пептонную.


2.1. Селенитовая среда


    Состав:


    Натрия гидроселенит (NaHSeO ) без примеси теллура               4

г


                               3


    Пептон                                                          5

г


    Натрия гидрофосфат безводный                                    7

г


    Натрия дигидрофосфат безводный (NaH PO )                        3

г


                                       2  4


    Лактоза                                                         4

г


    Вода дистиллированная                                          

1000 мл


Приготовление. Среду готовят из двух основных растворов.


Раствор 1. Определяют пропорцию натрия гидрофосфата и натрия дигидрофосфата с

используемым образцом пептона и натрия гидроселенита для установления pH 6,9 - 7,1. С этой

целью регулируют соотношение фосфатов. Подтитровка нужна всегда при изменении серии любого


Не является официальной версией, бесплатно предоставляется членам Ассоциации лесопользователей Приладожья, Поморья и Прионежья – www.alppp.ru. Постоянно действующий третейский суд.


из входящих в среду основных ингредиентов. После установления соотношения фосфатов к раствору

добавляют пептон и лактозу. Разливают во флаконы по 50 мл и стерилизуют текучим паром по 30

мин. два дня. Количество фосфатов в рецепте среды дано в расчете на безводные препараты. При

отсутствии таковых заранее заготовленные навески "выветривают" 15 - 16 сут. в термостате.


Раствор 2. 10-процентный раствор натрия гидроселенита готовят на стерильной

дистиллированной воде перед употреблением.


Перед началом работы во флакон с 50 мл раствора 1 добавляют 2 мл раствора 2, разливают по 5

- 7 мл в стерильные пробирки с соблюдением правил асептики и закрывают плотно пробками.

Дальнейшая стерилизация не требуется.


Основной раствор (первый) для среды можно хранить в холодильнике 1 - 2 мес. При

приготовлении среды следует использовать высококачественный пептон (желательно "Рихтер",

"Спофа" или жидкий аминопептид - отечественный заменитель импортного пептона).


2.2. Селенитовый бульон с аминопептидом


    Состав:


    Бульон аминопептидный                                          

960 мл


    Натрия гидрофосфат                                              8

г


    Натрия дигидрофосфат                                            2

г


    Натрия гидроселенит, 10-процентный водный раствор              

40 мл


    Бульон аминопептидный


    Состав:


    Аминопептид                                                    

250 мл


    Натрия хлорид (NaCl)                                           

5,5 г


    Вода дистиллированная                                          

750 мл


Приготовление. Среду хорошо перемешивают, стерилизуют 20 мин. при 121 °С. Готовый

бульон можно хранить в бутылях неопределенный срок, желательно при 6 - 10 °С.


К бульону непосредственно перед употреблением добавляют 40 мл стерильного 10-

процентного водного раствора натрия гидроселенита (рН при этом снижается на 0,1 - 0,2), среду

тщательно перемешивают и разливают в стерильные пробирки по 5 мл с соблюдением правил

асептики.


Примечание. Фосфаты натрия могут быть заменены фосфатами калия в тех же количествах .


Не является официальной версией, бесплатно предоставляется членам Ассоциации лесопользователей Приладожья, Поморья и Прионежья – www.alppp.ru. Постоянно действующий третейский суд.


2.3. Магниевая среда


Среда состоит из трех растворов.


    Раствор 1


    Пептон                                                         

4,2 г


    Натрия хлорид                                                  

7,15 г


    Калия дигидрофосфат                                            

1,48 г


    Дрожжевой диализат                                              9

мл


    Вода дистиллированная                                          

890 мл


    Раствор 2


    Магния хлорид (MgCl  х 6H O)                                   

35,7 г


                       2     2


    Вода дистиллированная                                          

90 мл


    Раствор 3


    Бриллиантовый зеленый, 0,5-процентный водный раствор           

0,9 мл


Приготовление. Все три раствора смешивают в указанных количествах, разливают в

необходимых объемах в колбы, флаконы или пробирки, стерилизуют при 112 °С 30 мин.


2.4. Среда Мюллера (тетратионатовый бульон Мюллера)


    Состав:


    Мел, стерилизованный сухим жаром                               

45 г


    или


    Кальция карбонат (CaCO ) сухой стерильный                      


Не является официальной версией, бесплатно предоставляется членам Ассоциации лесопользователей Приладожья, Поморья и Прионежья – www.alppp.ru. Постоянно действующий третейский суд.


25 г


                          3


    Бульон Хоттингера, содержащий 120 - 130 мг%                    

900 мл


    аминного азота


    Раствор Люголя (калия йодид (KI) - 20 г, йод кристаллический   

20 мл


    (I ) - 25 г, вода дистиллированная - 1000 мл)


      2


    Натрия тиосульфат (Na S O  х 5H O) <*>, 50-процентный          

100 мл


                         2 2 3     2


    стерильный раствор (к 50 г натрия тиосульфата добавляют воду


    до 100 мл, растворяют, переливают во флакон, стерилизуют


    текучим паром 30 мин.)


--------------------------------


<*> Натрия тиосульфат часто неправильно именуют гипосульфитом.


Приготовление. В стерильные флаконы помещают по 4,5 г мела, стерилизуют сухим жаром,

после чего в каждый флакон наливают 90 мл бульона Хоттингера. Стерилизуют 30 мин. при

температуре 121 °С (рН 7,2 - 7,4). В каждый флакон ex tempore добавляют 2 мл раствора Люголя и 10

мл раствора натрия тиосульфата с соблюдением правил асептики, хорошо смешивают и разливают по

пробиркам. Дальнейшая стерилизация не требуется.


2.5. Среда Кауфмана


    Состав:


    Среда Мюллера (стерильная)                                     

500 мл


    Желчь бычья (стерильная)                                       

250 мл


    Бриллиантовый зеленый, 0,1-процентный водный раствор           

50 мл


Приготовление. Ингредиенты смешивают, асептически разливают в стерильные пробирки по 10

мл, дополнительно не стерилизуют.


2.6. Бульон желчный 20-процентный


Не является официальной версией, бесплатно предоставляется членам Ассоциации лесопользователей Приладожья, Поморья и Прионежья – www.alppp.ru. Постоянно действующий третейский суд.


    Состав:


    Бульон мясо-пептонный или Хоттингера                           

800 мл


    Желчь бычья нативная                                           

200 мл


Приготовление. pH должен быть 7,6. Смесь разливают по 50 мл во флаконы с поплавками.

Стерилизуют текучим паром по 30 мин. три дня.


3. Дифференциально-диагностические среды для первичных посевов материала и высевов со

сред обогащения


По степени подавления роста посторонней микрофлоры среды подразделяют на

высокоселективные (висмут-сульфитный агар), среднеселективные (среда Плоскирева,

слабощелочной питательный агар) и низкоселективные (среды Эндо, Левина).


3.1. Учет роста на дифференциально-диагностических средах. На висмут-сульфитном агаре

почти все сальмонеллы растут в виде черных колоний с характерным металлическим блеском, при

этом наблюдается прокрашивание в черный цвет участка среды под колонией. Исключение

составляет S. choleraesuis (группа C), которая при росте на этой среде образует светлые нежные

зеленоватые колонии. Просмотр чашек с висмут-сульфитным агаром проводят через 24 и 48 ч после

посева.


На средах Плоскирева, Эндо, Левина сальмонеллы образуют мелкие (1 - 2 мм в диаметре),

слегка выпуклые с ровным краем и гладкой поверхностью влажные колонии. На среде Плоскирева

колонии бесцветные, мутноватые, уплотненные; Эндо - обычно прозрачные, слегка розоватые;

Левина - прозрачные с легким фиолетовым оттенком; на слабощелочном питательном агаре (СПА) -

нежные, прозрачные, голубоватые.


4. Среды для первичной идентификации


4.1. Агар Клиглера


Коммерческую сухую среду готовят в соответствии с указаниями на этикетке. Готовая к

употреблению среда имеет красновато-бурый или оранжево-красный цвет. При скашивании следует

оставлять столбик высотой 2 - 2,5 см.


4.2. Комбинированная среда по Олькеницкому


    Состав:


    Агар питательный сухой                                         

25 г


    Лактоза                                                        

10 г


    Аммоний-железо (II) сульфат (FeSO  х (NH ) O  х 6H O)          


Не является официальной версией, бесплатно предоставляется членам Ассоциации лесопользователей Приладожья, Поморья и Прионежья – www.alppp.ru. Постоянно действующий третейский суд.


0,2 г


                                     4      4 2 4     2


    Натрия тиосульфат                                              

0,3 г


    Мочевина                                                       

10 г


    Феноловый красный, 0,4-процентный водный раствор                4

мл


    Вода дистиллированная                                          

1000 мл


Приготовление. Соли предварительно растворяют в небольшом объеме дистиллированной

воды. Углеводы и мочевину также растворяют в небольших объемах воды при подогревании на

водяной бане. Сухой питательный агар расплавляют в оставшемся объеме воды при нагревании и

помешивании. Затем все ингредиенты соединяют, перемешивают с расплавленным агаром,

фильтруют через марлевый фильтр, устанавливают pH 7,2 - 7,4, добавляют индикатор и разливают в

пробирки по 6 - 7 мл. Среду стерилизуют текучим паром по 20 мин. три дня и скашивают, оставляя

столбик 2 - 2,5 см. Готовая среда бледно-розового цвета.


4.3. Учет биохимических свойств сальмонелл на указанных средах проводят визуально.

Появление желтой окраски в скошенной части агара характеризует ферментацию лактозы (и сахарозы

в среде Олькеницкого), в столбике - глюкозы.


Газообразование устанавливают по появлению пузырьков, разрывам агара или его отслоению

от стенок пробирки.


Об образовании сероводорода судят по почернению среды, обычно в середине столбика.


При росте культуры, гидролизующей мочевину, среда Олькеницкого приобретает красно-

малиновый цвет.


При росте культур, образующих большое количество сероводорода или гидролизующих

мочевину, учет ферментации углеводов в большинстве случаев невозможен.


4.4. Приготовление среды Ресселя (сухой) описано на этикетке. Учет роста сальмонелл указан в

п. 4.3.


5. Среды для биохимической дифференциации


5.1. Цитратный агар Симонса


Коммерческую сухую среду готовят согласно указаниям на этикетке препарата. Среду разливают

в пробирки по 5 - 7 мл, при скашивании после стерилизации которых оставляют столбик 2 - 2,5 см.


Бактерии, усваивающие цитрат, окрашивают среду в синий цвет.


5.2. Агар с фенилаланином


    Состав:


Не является официальной версией, бесплатно предоставляется членам Ассоциации лесопользователей Приладожья, Поморья и Прионежья – www.alppp.ru. Постоянно действующий третейский суд.


    Дрожжевой экстракт сухой                                        3

г


    или


    Экстракт жидкий                                                

100 мл


    Натрия хлорид                                                   5

г


    Натрия гидрофосфат                                              1

г


    L-фенилаланин                                                   2

г


    или


    DL-фенилаланин


    Агар-агар                                                      

12 г


    Вода дистиллированная                                          

1000 мл


Приготовление. Дрожжевой экстракт вносят в холодную воду, нагревают, затем

последовательно добавляют остальные ингредиенты и кипятят до полного расплавления агара (5 - 10

мин.), фильтруют через ватно-марлевый фильтр и разливают по 2 - 3 мл в пробирки. pH среды

должен быть 7,0 - 7,2. Стерилизуют 30 мин. при температуре 112 °С и охлаждают в скошенном

положении. Готовая среда не окрашена.


    На  выросшую  культуру  по  скошенной  части  агара вносят 4 - 5

капель


реактива  (10-процентного  водного  раствора  железа  (III хлорида -

FeCl ,


                                                                        

3


хранящегося  при  4  -  6  °С  без  доступа  света). При наличии в

культуре


фенилаланиндезаминазы образуется дорожка зеленого цвета.


    5.3. Среда с мочевиной по Кристенсену


    Состав:


    Пептон                                                          1

г


    Натрия хлорид                                                   5

г


Не является официальной версией, бесплатно предоставляется членам Ассоциации лесопользователей Приладожья, Поморья и Прионежья – www.alppp.ru. Постоянно действующий третейский суд.


    Калия дигидрофосфат                                             2

г


    Агар-агар                                                      

20 г


    Глюкоза                                                         1

г


    Феноловый красный, 0,2-процентный раствор                       6

мл


    Мочевина, 20-процентный раствор                                

100 мл


    Вода дистиллированная                                          

1000 мл


Приготовление. Пептон, соли и агар растворяют при нагревании, фильтруют и стерилизуют 20

мин. при температуре 115 °С. Затем добавляют глюкозу и индикатор, стерилизуют текучим паром 1 ч,

охлаждают до 50 - 55 °С, после чего вносят раствор мочевины, профильтрованный через фильтр

Зейтца <*>. Готовую среду разливают в стерильные пробирки с соблюдением правил асептики и

охлаждают в скошенном положении.


--------------------------------


<*> Возможно использование 50-процентного водного раствора мочевины, выдержанного 2 - 3

сут. для самостерилизации и добавленного к среде из расчета конечного содержания мочевины в

среде 2%.


При выделении культурой уреазы, среда приобретает малиновый цвет.


5.4. Среда с мочевиной по Преусу


    Состав:


    Бульон Хоттингера                                              

1000 мл


    Агар-агар                                                      

15 г


    Глюкоза                                                         5

г


    Мочевина, 50-процентный водный раствор                         

20 мл


    Бромтимоловый синий, 0,2-процентный водный раствор             

12 мл


Приготовление. Агар расплавляют в бульоне при подогревании, фильтруют, устанавливают pH


Не является официальной версией, бесплатно предоставляется членам Ассоциации лесопользователей Приладожья, Поморья и Прионежья – www.alppp.ru. Постоянно действующий третейский суд.


6,9 - 7,0. Стерилизуют 20 мин. при температуре 121 °С. К стерильному питательному агару

добавляют глюкозу, мочевину, индикатор. Стерилизуют текучим паром 15 мин., после чего

скашивают. Цвет готовой среды оливковый. В случае гидролиза мочевины среда приобретает синий

цвет.


5.5. Среда Кларка


    Состав:


    Пептон                                                          5

г


    Калия гидрофосфат                                               5

г


    Глюкоза                                                         5

г


    Вода дистиллированная                                          

1000 мл


Приготовление. Ингредиенты растворяют в воде, кипятят 2 - 3 мин., фильтруют через

бумажный фильтр, устанавливают pH 6,9 - 7,0, разливают в пробирки. Стерилизуют 20 мин. при

температуре 112 °С или по 20 мин. три дня текучим паром.


Среду Кларка применяют для постановки реакций с метиловым красным (метилротом) и Фогес-

Проскауэра.


Реакция с метиловым красным


    Состав реактива:


    Метиловый красный                                              

0,1 г


    Спирт этиловый 96-градусный                                    

300 мл


    Вода дистиллированная                                          

200 мл


Приготовление. Краску растворяют в спирте, затем добавляют воду до 500 мл.


Для постановки реакции к четырехсуточной культуре добавляют 3 - 5 капель реактива. В случае

образования кислоты при ферментации глюкозы среда окрашивается в красный цвет. При слабом

кислотообразовании цвет среды желтый.


Реакция Фогес-Проскауэра


Не является официальной версией, бесплатно предоставляется членам Ассоциации лесопользователей Приладожья, Поморья и Прионежья – www.alppp.ru. Постоянно действующий третейский суд.


    Состав реактивов:


    6-процентный раствор L-нафтола                                 

30 г


    Спирт этиловый 96-градусный                                    

500 мл


    Калия гидроокись (KOH)                                         

120 г


    Вода дистиллированная                                          

300 мл


Реактивы смешивают перед применением.


К четырехсуточной культуре добавляют равный объем смеси реактивов. Через 4 - 6 ч

инкубирования в термостате учитывают цвет среды. В положительном случае среда приобретает

розовый цвет с желтым оттенком.


5.6. Среды с углеводами <*>


--------------------------------


<*> Выпускаются коммерческие сухие среды с углеводами (глюкозой, лактозой, мальтозой,

сахарозой и маннитом). Их приготовление указано на этикетке.


    Состав:


    Пептон                                                       10 г


    Натрия хлорид                                                5 г


    Индикатор Андреде                                            10

мл


    Углевод                                                      5

или 10 г


    Вода дистиллированная                                        1000

мл


В качестве индикатора pH могут быть использованы растворы бромтимолового синего,

фенолового красного или бромкрезолового пурпурного. Для специальных целей среду с лактозой

готовят с большим содержанием сахара (2 - 10%). К средам может быть добавлен агар (0,2 - 0,4%).


Приготовление. Пептон растворяют в воде при подогревании, добавляют натрия хлорид и

индикатор, фильтруют, устанавливают pH 7,1 - 7,2, стерилизуют 15 мин. при температуре 121 °С. К

стерильной основе добавляют соответствующий углевод: 1% лактозы, глюкозы, маннита или

сахарозы или 0,5% рамнозы, ксилозы, мальтозы, арабинозы, салицина, трегалозы, рафинозы,

целлобиозы, дульцита, сорбита, адонита или глицерина. Среду разливают в стерильные пробирки по

3 - 4 мл, в пробирки с глюкозой помещают поплавки (перевернутые бродильные пробирки Дюрхема).

Стерилизуют 30 мин. при температуре 110 °С или дробно текучим паром по 30 мин. два дня. Готовая


Не является официальной версией, бесплатно предоставляется членам Ассоциации лесопользователей Приладожья, Поморья и Прионежья – www.alppp.ru. Постоянно действующий третейский суд.


среда должна быть соломенно-желтого цвета без розового оттенка.


При образовании кислоты цвет среды меняется от бледно-розового до красного.


В коммерческие среды добавляют индикатор бромкрезоловый пурпуровый. В этом случае цвет

готовой среды - фиолетовый, при образовании кислоты меняется до желтого или желто-коричневого.


5.7. Среды для определения индолообразования. Культуру высевают на одну из следующих

сред: бульон на триптическом переваре казеина (1,2 - 1,4% аминного азота); бульон на триптическом

переваре Хоттингера (1,2 - 1,4% аминного азота); 2-процентная пептонная вода; 1-процентная

пептонная вода с добавлением 0,3% L-триптофана; полужидкий агар, приготовленный на бульоне

Хоттингера. Через 24 и 48 ч инкубирования ставят реакцию с реактивом Эрлиха.


К бульонной культуре приливают 2 - 3 мл эфира. Содержимое перемешивают, дают эфиру

отстояться и добавляют несколько капель реактива следующего состава:

парадиметиламидобензальдегида 1 г, крепкой хлористоводородной кислоты 20 мл, 96-градусного

спирта 95 мл.


В присутствии индола эфир окрашивается в розовый или красный цвет.


5.8. Среды с аминокислотами - лизином, оринтином и аргинином


    Состав:


    Вода дистиллированная                                        1000

мл


    Пептон                                                       5 г


    Дрожжевой экстракт                                           8 г


    или


    Аутолизат дрожжей                                            12 -

15 мл


    Глюкоза                                                      1 г


    Бромкрезоловый пурпурный, 1,6-процентный спиртовой раствор   0,6

мл


    Крезоловый красный, 0,1-процентный спиртовой раствор         5 мл


    L-аминокислота                                               10 г


    или


    DL-аминокислота                                              20 г


Указанный в прописи индикатор может быть заменен на бромтимоловый синий (1 мл 1,6-

процентного спиртового раствора).


Вместо дрожжевого экстракта или аутолизата дрожжей можно брать 400 мл мясной воды,

соответственно уменьшив объем дистиллированной воды до 600 мл.


Не является официальной версией, бесплатно предоставляется членам Ассоциации лесопользователей Приладожья, Поморья и Прионежья – www.alppp.ru. Постоянно действующий третейский суд.


Приготовление. В воде растворяют белковую питательную основу и глюкозу. Устанавливают

pH 6,0 - 6,1. Затем среду делят на равные части. В каждую из трех порций вносят одну из

аминокислот (лизин, орнитин или аргинин) в количестве, зависящем от кристаллизационной формы

реактива (L или DL). В последнюю порцию питательной основы аминокислот не добавляют,

оставляя ее в качестве контрольной. Среды кипятят 5 - 10 мин. и вновь устанавливают pH 6,0 - 6,1.

Во все порции вносят раствор индикатора, перемешивают, разливают в пробирки по 2 - 3 мл.

Стерилизуют 30 мин. при температуре 110 °С. Цвет среды от желтого до оливкового, который при

расщеплении аминокислот изменяется в зависимости от применяемого индикатора.


5.9. Глицерино-фуксиновый бульон Штерна


    Состав:


    Бульон Хоттингера стерильный, pH 8,0                           

1000 мл


    Фуксин основной, насыщенный спиртовой раствор                  

2,5 мл


    Натрия сульфит (Na SO ), 10-процентный водный раствор          

16,6 мл


                      2  3


    Глицерин нейтральный                                           

10 мл


Приготовление. К бульону добавляют раствор фуксина, свежеприготовленный раствор сульфита

натрия и глицерин, хорошо смешивают, разливают в пробирки по 6 - 7 мл, стерилизуют 15 мин. при

температуре 112 °С. Хранят среду в холодильнике не более 14 дней.


5.10. Полужидкий агар для определения подвижности


    Состав:


    Натрия хлорид                                              5 г


    Гидролизат Хоттингера                                      120 -

150 мл


    Агар-агар                                                  3 - 4

г


    Вода дистиллированная                                      1000

мл


Приготовление. Перевар Хоттингера разводят водой до содержания в среде 1,2 - 1,4% аминного

азота, добавляют хлорид натрия, устанавливают pH 7,2 - 7,4, вносят агар и полностью расплавляют

его, подогревая среду при постоянном помешивании. Затем фильтруют в горячем состоянии через

тканевый фильтр, проверяют прозрачность (визуально) и в случае необходимости осветляют с


Не является официальной версией, бесплатно предоставляется членам Ассоциации лесопользователей Приладожья, Поморья и Прионежья – www.alppp.ru. Постоянно действующий третейский суд.


помощью яичного белка или путем отстаивания в узких сосудах. Среду стерилизуют в пробирках 30

мин. при 121 °С. Охлаждают в вертикальном положении.


Примечание. Среда может быть одновременно использована для определения

индолообразования.


Приложение 4

1   ...   4   5   6   7   8   9   10   11   12

Похожие:

Утверждены Минздравом СССР лабораторная диагностика сальмонеллезов человека и животных, обнаружение сальмонелл в кормах, продуктах питания и объектах внешней среды (методические указания) iconМетодические указания Методические указания разработаны фгун «цнии эпидемиологии»
Лабораторная диагностика сальмонеллезов, обнаружение сальмонелл в пищевых продуктах
Утверждены Минздравом СССР лабораторная диагностика сальмонеллезов человека и животных, обнаружение сальмонелл в кормах, продуктах питания и объектах внешней среды (методические указания) iconМетодические указания му 1 1189-03 "Профилактика и лабораторная диагностика бруцеллеза людей"
Методические указания "Профилактика и лабораторная диагностика бруцеллеза людей" разработаны в помощь специалистам санитарно-эпидемиологических,...
Утверждены Минздравом СССР лабораторная диагностика сальмонеллезов человека и животных, обнаружение сальмонелл в кормах, продуктах питания и объектах внешней среды (методические указания) iconМетодические указания му 1097-02 "Лабораторная диагностика холеры"
Методические указания предназначены для специалистов бактериологических лабораторий центров госсанэпиднадзора, лечебно-профилактических...
Утверждены Минздравом СССР лабораторная диагностика сальмонеллезов человека и животных, обнаружение сальмонелл в кормах, продуктах питания и объектах внешней среды (методические указания) iconПояснительная записка к выполнению Плана Государственного ветеринарного мониторинга остатков запрещенных и вредных веществ в организме живых животных, продуктах животного происхождения и кормах за 2011 год. В 2011 году мониторинг
В 2011 году мониторинг мониторинга остатков запрещенных и вредных веществ в организме живых животных, продуктах животного происхождения...
Утверждены Минздравом СССР лабораторная диагностика сальмонеллезов человека и животных, обнаружение сальмонелл в кормах, продуктах питания и объектах внешней среды (методические указания) iconВопросы дли сертификационного экзамена по специальности клиническая лабораторная диагностика
Лабораторная диагностика анемий. Лабораторная диагностика острой постгеморрагической и железодефицитной анемий. Лабораторная диагностика...
Утверждены Минздравом СССР лабораторная диагностика сальмонеллезов человека и животных, обнаружение сальмонелл в кормах, продуктах питания и объектах внешней среды (методические указания) iconМетодические указания до практических занятий для студентов стоматологического факультета
Лабораторная диагностика стрептококковых инфекций. Кариесогенные стрептококки полости рта
Утверждены Минздравом СССР лабораторная диагностика сальмонеллезов человека и животных, обнаружение сальмонелл в кормах, продуктах питания и объектах внешней среды (методические указания) iconУтверждены Минздравом СССР социально-гигиеническое изучение формирования здоровья детей (методические рекомендации)
Сохранение и развитие здоровья детей составляет важнейшую государственную задачу
Утверждены Минздравом СССР лабораторная диагностика сальмонеллезов человека и животных, обнаружение сальмонелл в кормах, продуктах питания и объектах внешней среды (методические указания) iconУтверждены Приказом Госгражданстроя СССР от 11 декабря 1985 г. N 404
Утверждены Приказом Госгражданстроя СССР от 11 декабря 1985 г. N 404 по согласованию с Госстроем ссср, гупо мвд СССР и Минздравом...
Утверждены Минздравом СССР лабораторная диагностика сальмонеллезов человека и животных, обнаружение сальмонелл в кормах, продуктах питания и объектах внешней среды (методические указания) iconУтверждаю Заместитель Главного государственного санитарного врача СССР а. И. Заиченко 11 ноября 1986 г. N 4218-86 гигиенические требования к технологическим процессам получения и применения ванадия, его соединений и сплавов (методические указания)
Методические указания предназначены для санитарно-эпидемиологической службы, осуществляющей контроль за состоянием условий труда...
Утверждены Минздравом СССР лабораторная диагностика сальмонеллезов человека и животных, обнаружение сальмонелл в кормах, продуктах питания и объектах внешней среды (методические указания) iconМетодические указания по га3охроматографическ0му измерению концентраций
Утверждены заместителем Главного государственного санитарного врача СССР а. И. Заиченко 6 сентября 1983 г. N 2905-83
Разместите кнопку на своём сайте:
Библиотека


База данных защищена авторским правом ©tnu.podelise.ru 2013
обратиться к администрации
Библиотека
Главная страница